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NEWSJ9九游会生物细胞爬片免疫荧光实验步骤
来源:温梅维 日期:2025-03-06以下是实验室细胞染色操作步骤:
在培养板中,将已附着的细胞玻片用PBS缓冲液浸洗三次,每次持续三分钟,以去除细胞外的多余物质。
使用4%的多聚甲醛固定爬片15分钟,再次用PBS洗涤三次,每次三分钟,以确保细胞结构的完整性。
使用5%的Triton X-100(PBS配制)在室温下透化20分钟。若细胞膜上有表达的抗原可跳过此步骤。
再次用PBS洗涤玻片三次,每次三分钟,吸去多余液体后,在玻片上滴加正常山羊血清(前提是二抗来源是山羊),并于室温下封闭30分钟。
用吸水纸吸掉封闭液,不再洗涤,每张玻片中滴加适量稀释后的一抗,置于湿盒中,于4°C下孵育过夜。
用PBST浸洗爬片三次,每次三分钟,吸去多余液体后,滴加稀释好的荧光二抗,在湿盒中于20-37°C孵育1小时,再次用PBST浸洗切片三次,每次三分钟。注意:从此步骤开始,所有后续操作应尽量在昏暗环境中进行。
吸水纸吸干液体后,在玻片上滴加正常山羊血清,室温下封闭30分钟,确保后续实验的特异性。
用吸水纸吸掉血清封闭液,滴加稀释好的第二种一抗,之后也要在4°C的湿盒中避光孵育过夜。请确保第二种一抗和第一种一抗来源于不同物种(例如小鼠和兔)。
用PBST浸洗爬片三次,每次三分钟,随后滴加稀释好的第二种荧光二抗,在湿盒中于20-37°C孵育1小时,结束后再次用PBST洗涤切片三次,每次三分钟。注意:若第一种抗体使用红色荧光,则第二种必须选择不同颜色的荧光。
滴加DAPI荧光染料,避光孵育5分钟,然后用PBST洗涤四次,每次五分钟,以去除多余的DAPI。
用吸水纸吸干爬片上的液体,使用含抗荧光淬灭剂的封片液封片,然后在荧光显微镜下进行观察并采集图像。
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